1, 请问哪里可以下载到细胞培养的视频教程？？急
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2, 求视频：RAW264.7细胞的培养 视频
1.取干净的盖玻片（剪去一角，以作为正反的标记）若干，用洗衣粉轻轻擦洗后烤干（注意轻柔，不要留下明显痕迹，方便以后观察细胞）。2.硫酸重铬酸钾过夜。3.取出盖玻片后，用自来水反复冲洗20遍。4.用一蒸水漂洗10分钟，三蒸水冲洗3遍。5.晾干后泡纯酒精过夜（主要是脱脂，也可用95%酒精），用镊子夹出（不能用手去接触玻片，否则应重新泡酒精脱脂），蒸馏水清洗后自然晾干（烤干容易使玻片留下水迹，而晾干的则清新干净）。6.高温高压消毒。
3, 细胞培养用的爬片怎么处理
你可以到生物帮那里了解，生物帮是生物行业门户网站，有丰富的生命科学领域产品、技术文档、视频资源。在细胞培养过程中，除了培养基外，还经常用到一些平衡盐溶液、消化液、pH调整液等。平衡盐溶液（balanced salt solution,BSS）：主要是由无机盐、葡萄糖组成，它的作用是维持细胞渗透压平衡，保持pH稳定及提供简单的营养。主要用于取材时组织块的漂洗、细胞的漂洗、配制其他试剂等。最简单的BSS是Ringer。D-Hank"s与Hank"s的一个主要区别是前者不含有Ca2+、Mg2+，因此D-Hank"s常用于配制胰酶溶液。Earle平衡液含有较高的NaHCO3(2.2g/L)，适合于5%CO2的培养条件，Hank"s平衡液仅含有0.35g/L NaHCO3，不能用于5%CO2的环境，若放入CO2培养相，溶液将迅速变酸，使用时应注意。配制溶液应使用双蒸水或去离子水。如果配方中含有Ca2+、Mg2+，应当首先溶解这些成分。配好的平衡盐溶液可以过滤除菌或高温灭菌。消化液：取材进行原代培养时常常需要将组织块消化解离形成细胞悬液，传代培养时也需要将贴壁细胞从瓶壁上消化下来，常用的消化液有胰酶（Trypsin）溶液和EDTA溶液，有时也用胶原酶（collagenase）溶液。可以参考：please click to connect . can help you1.胰酶溶液：胰酶活性可用消化酪蛋白的能力表示，常见有1:125和1:250，即一份胰酶可消化125或250份酪蛋白。组织培养用胰酶溶液一般配制成0.1-0.25%浓度，配制时要用不含Ca2+、Mg2+及血清的平衡盐溶液（如前面的D-Hank"s），因为这些物质会对胰酶产生抑制作用。胰酶作用及溶解的最佳pH是8-9，配制胰酶溶液应将液体调至pH8左右，充分溶解，过滤除菌。过滤后可以再调只pH7.5，也可不调。使用细胞清洗液配制胰酶消化液：含0.5%胰酶的细胞清洗液（100ml细胞清洗液加0.5g胰酶），过滤除菌，分装于4度保存。2.EDTA溶液：EDTA溶液也常用来解离细胞，它的作用机制是破坏细胞间的连接。对于一些贴壁特别牢固的细胞，还可以用EDTA和胰酶的混合液进行消化。EDTA溶液的使用浓度为0.02%，配制时应加碱助溶，配制后可过滤除菌，也可高温消毒灭菌。3.胶原酶溶液：胶原酶在上皮类细胞原代培养时经常使用，胶原酶作用的对象是胶原组织，因此不容易对细胞产生损伤。胶原酶的使用浓度为0.1-0.3mg/L或200000U/L，作用的最佳pH为6.5。胶原酶不受Ca2+、Mg2+及血清的抑制，配制时可用PBS。pH调整液：常用的有HEPES液和NaHCO3溶液。1.NaHCO3溶液：NaHCO3是培养基中必须添加的成分，一般情况下按说明书的要求准确添加，以保证培养基在5%CO2的环境下pH达到设计标准。如果是封闭式培养，即不与5%CO2的环境发生交换达到平衡，所使用的培养基就不能按照说明书所要求加入NaHCO3。此时常用5.6%或7.4%的NaHCO3溶液调节培养基，使之达到所要求的pH环境。2.HEPES溶液：是一种弱酸，中文名字是羟乙基哌秦乙硫磺酸，对细胞无毒性，主要作用是防止培养基pH迅速变动。在开放式培养条件下，观察细胞时培养基脱离了5%CO2的环境，CO2气体迅速逸出，pH迅速升高，若加了HEPES，此时可以维持pH7.0左右。一般在进行克隆化培养时要添加HEPES。
名词解释
盖玻片
载玻片是在实验时用来放置实验材料的玻璃片，呈长方形，较厚，透光性较好
玻片
当用显微镜(microscope)观察细胞时，应用薄薄的易碎透明小片，这个小片就是玻片。在光学上， 用于产生相位差的一种类似玻璃材料的薄片
